人类细小病毒阳性

篇一：犬细小病毒的常识,宠物主人必须知道!

犬细小病毒的常识，宠物主人必须知道！

一、关于“犬细小病毒”

1.概念

犬细小病毒（CPV）属细小病毒科。细小病毒科是已发现的真病毒中个体最小﹑结构最简单的DNA病毒。犬细小病毒感染是20世纪70年代发现的一种烈性传染病，临床表现为急性出血性胃肠炎或非化脓性心肌炎。其非经治疗的成活率＜5%。

★ 病原

犬细小病毒（CanineParvovirus，CPV）属细小病毒科，细小病毒属。CPV对多种理化因素和常用消毒剂具有较强的抵抗力，在4-10度存活6个月，37度存活2周，56度存活24小时，80度存活15分钟，在室温下保存3个月感染性仅轻度下降，在粪便中可存活数月至数年。该病毒对乙醚，氯仿，醇类有抵抗力，对紫外线，福尔马林，次氯酸钠，氧化剂敏感。

★流行病学

CPV主要感染犬，尤其幼犬，传染性极强，死亡率也高。一年四季均可发病，以冬，春多发。饲养管理条件骤变，长途运输，寒冷，拥挤均可促使本病发生。病犬是主要传染源，呕吐物，唾液，粪便中均有大量病毒。康复犬仍可长期通过粪便向外排毒。有证据表明人，虱，苍蝇和蟑螂可成为CPV的机械携带者。健康犬与病犬或带毒犬直接接触，或经污染的饲料和饮水通过消化道感染。

★ 发病机理

健康犬经消化道感染病毒后，病毒主要攻击两种细胞，一种是肠上皮细胞，一种是心肌细胞，分别表现胃肠道症状和心肌炎症状，心肌炎以幼犬多见。

2.犬细小病毒感染的流行特征

犬细小病毒感染的潜伏期为7—14天。

犬感染细小病毒发病急，死亡率高，常呈爆发性流行。不同年龄、性别、品种的犬均可感染，但以刚断奶至免疫为未完成其间的幼犬居多，病情也较严重。

纯种犬较杂交犬易感染。

3.犬细小病毒的传染源和传播途径

病犬是主要的传染源。感染后1—2周内粪便排毒，以4—7天排毒最多。发病急性期，呕吐物和唾液中也可排毒。康复犬可长期通过粪便排毒。

犬细小病毒主要的感染途径有两种。一是病犬和健康犬直接接触或经污染的饲料和饮水通过消化道感染。二是人、虱、苍蝇和蟑螂等接触犬细小病毒后成为病毒的携带者，间接感染了健康犬。

4.犬细小病毒感染的多发季节

犬细小病毒感染一年四季均可发生，但以冬春两季多发。

二. 犬细小病毒感染的临床症状

犬细小病毒感染后在临床上表现各异，但主要表现为肠胃炎或心肌炎两型，有时一些肠胃炎型病例也伴有心肌炎病变。

1.肠胃炎型

发病初期病犬厌食，抑郁，发热（40--41℃）或呕吐。随后出现腹泻。大便初呈黄或灰黄色随后呈酱红色，恶臭。胃肠道症状出现1—2天后表现脱水和体重减轻。多数病犬扁桃体和头颈部淋巴结肿大，有的病犬口腔内可见小泡。

2.心肌炎型

多见于4—6周龄幼犬，也见于成犬。常无先兆性症状，或仅表现为轻度腹泻，继而出现衰弱，呼吸困难，心率快而弱，心脏听诊出现杂音，心率不齐，心电图发生病理性改变。犬一般短时间内死亡。

三. 犬细小病毒感染的诊断

1.一般诊断

利用抗原-抗体中和反应进行确诊，即采取疑是犬细小病毒感染犬的粪便通过胶体金实验测毒，阳性为已感染；阴性为未感染。此诊断方法阳性的确诊率为100%；阴性可结合犬免疫或治疗情况做进一步的分析。

2.特殊情况下的诊断

进行过紧急免疫或治疗中注射过抗体（血清）的犬只以及非排毒期的犬只胶体金实验测毒可出现假阴性，可通过生化仪测肌酐激酶进行诊断。

四. 犬细小病毒感染的治疗

1.治疗方案

禁食并遵医嘱禁水。防止胃肠因进食（水）后蠕动引起的进一步损害。

输液（血）补充体液并纠正因呕吐或失水等原因引起的电解质紊乱和酸中毒。

特异性治疗方法利用犬细小病毒单克隆抗体中和犬体内病毒。

一般症状控制控制犬细小病毒感染引起的胃肠细菌感染，出血、呕吐、腹泻、疼痛等症状。

2.肠胃保护

犬细小病毒感染引起的胃肠出血，胃肠黏膜脱落以及呕吐导致胃液倒流引起的食道、鼻腔炎症都需要辅助治疗，起到保护正常组织、修复受损组织、缩短治疗周期的作用。

五. 疗程 5—7天

六. 犬细小病毒感染的治愈率

经过统计，犬细小病毒感染的治愈率在50--90﹪之间，其治愈率同诊断水平、治疗方案选择、护理技术密切相关。

七. 影响犬细小病毒感染的治愈率的主要因素

1.免疫情况完成免疫程序的犬只，不论采取的是主动免疫还是被动免疫，都能减轻发病症状。

2.治疗时机由于犬细小病毒感染发病急，症状严重，因此必须及早确诊及早治疗。耽误一天往往造成病情加重。

篇二：血液制品中人细小病毒污染及其灭活进展

【综述】血液制品中人细小病毒污染及其灭活进展

王敏 侯继锋

【摘 要 】人细小病毒感染率高，献浆员中阳性捐献者的病毒载量很高，导致病毒对原料血浆污染率高，血液制品生产工艺中现有的病毒灭活方法不能将细小病毒有效的灭活，因此存在潜在传播病毒的风险。对血液制品中病毒，尤其是无包膜病毒的有效去除/灭活迫在眉睫。用紫外线对病毒灭活处理由来已久，一种新的短波紫外灭活方法对无包膜病毒灭活效果好，血液制品蛋白回收率高，具有好的研究应用前景。

【关键词】人细小病毒B19；感染率；血液制品；病毒灭活；紫外灭活

Contamination of human parvovirus B19 in plasma-derived

medicinal products and its inactivated progress

WANG Min, HOU Ji - fen

Objective: The infection frequency of human parvovirus B19 is high in general population, and in the plasma donors, this resulting in the high viral load in source plasma. At the same time, human parvovirus B19 can not be inactivated or removed effectively by the existing manufacturing processes, therefore there are potential risk of transmission after administing some blood products. It is imminent to explore a new way to due with the virus especially the uncoated virus in blood products. It is a long time history of using ultraviolet radiation to keep sterilization, and recent research has found that shortwave ultraviolet has a perfectly good effection on uncoated virus inactivation, meanwhile rarely damage the protein of products. The author suppose the new way has a bright prospect.

Key word: human parvovirus B19; infection rates; blood products; virus inactivation; ultraviolet inactivation

血液制品的独特疗效和安全性关系到人民的生命健康，原料血浆的病毒安全性控制是血液制品（血浆蛋白衍生物）的安全与质量控制的关键，世界各国药品监管机构都非常关注这一问题。可经血/血液制品传播的病毒有甲型肝炎病毒（HAV)、乙型肝炎病毒(HBV)、人免疫

[1]缺陷病毒(HIV)、人类细小病毒(B19) ,巨细胞病毒(CMV)以及人类朊病毒。现阶段，国内

外普遍采用原料血浆病原体筛查、原料血浆检疫期管理和血浆蛋白分离过程中增加病毒灭活/去除工艺等不同手段，进行病毒安全性控制，以最大限度降低血液制品病原体污染的风险。另外各种病原体核酸扩增检测技术从生产源头起作用，以灵敏度高和特异性强的特点成为迄今为止最灵敏的病毒检测方法，已经广泛用于原料血浆的病原体早期筛查。该方法显著降低了HIV、HCV和HBV的血清学检测的窗口期,HIV可以减少10-11天、HCV可以减少57-59天、

[2]HBV可以减少30天，从而显著降低经血液传播的病毒污染血液制品的风险。

1.人细小病毒B19

人细小病毒B19(human parvovirus B19,简称B19)，最早由Cossart于1975年在筛选

[3]献血员乙型肝炎抗原时发现，是已知唯一对人类致病的细小病毒，病毒无包膜、耐热，直

径小(18～20 nm)，基因组为线性单链DNA分子，约5.5kb，分子量约为50～80KD，对称二

[4]十面体。

1.1 人细小病毒的流行情况

普通人群中流行情况：人细小病毒B19感染非常普遍，全年均可发生，但主要发生在晚

12[5]冬和早春季节，该病毒可通过呼吸道传播,病毒血症时血液中B19 DNA可到达10拷贝/ml。

大约40%～60%的成年人都曾感染过B19病毒,体内出现IgG抗体,且IgG抗体阳性率随年龄增长而增长，5岁以下儿童及20岁以上成人其阳性率分别为2%和49%，在70岁左右的人群

[6]中,80%以上的血清标本中存在抗B19 IgG抗体。在国内没有相关的流行数据报道。

献浆员中流行情况：在无偿献血者中病毒血症的出现频率约1/260～1/40000，年龄段集

411中在35～45岁之间。其中阳性捐献者病毒血症时病毒载量为2.3×10到6.9×10拷贝/ml(约

412合7.1×10到2.1×10IU/ml)，在急性期过后的几个月，少数甚至几年后仍有低水平的B19

[1]DNA被PCR检测到。国内也有报道吉林省供血者人类细小病毒感染的流行病学情况，在184

[7]份血清中,抗B19 IgG抗体总检出率约为55.43%，且女性抗体阳性率高于男性。山东鲁西地

区小样本献血员与孕妇人细小病毒B19筛查结果显示，300名献血员中，有19例人细小病毒感 _______________________________

基金项目：国家科技支撑计划项目（No.2008BAI54B08).

作者单位：中国药品生物制品检定所（北京 100050).

通讯作者：侯继锋，E-mail:mickeywang@163.com.

染阳性，阳性率为6.33%，且献血员人细小病毒感染率和孕妇感染率比较差异不显著。

1.2 B19病毒感染主要会对以下三类人群造成严重危害：孕妇，免疫力低下/缺陷的人 及儿童。在孕妇病原体感染因素方面，人细小病毒B19是除巨细胞病毒、单纯疱疹病毒、风疹病毒、弓形虫感染之外造成孕妇自然流产的重要病原体之一,反复自然流产孕妇和正常孕妇的流产组织可检测到B19 DNA。B19病毒感染还可以引起儿童的第五病，成人的风湿性关

[9～12]节炎，溶血贫血患者的再生障碍危象和免疫抑制患者的红细胞再生障碍等疾病。

1.3 B19病毒对血液制品的威胁

尽管人们认为B19存活感染期短,高滴度的病毒血症只持续7到10天,然而一个感染者体内的低水平病毒量(常在10，000～100，000拷贝/ml) 可持续数月直到病毒被全清除。并且由于B19病毒直径小、耐热、对人群的易感性及目前灭活/去除血液制品中病毒的S/D法、过

[13～16】滤法和热处理法均不能有效的灭活/去除该病毒，使得大多经过分离处理的血浆和终产

品仍遭受污染，并常含有较高的病毒载量，使B19病毒成为血液制品的主要污染病毒之一。B19病毒DNA污染凝血因子Ⅷ、凝血酶原复合物、因子Ⅶ等血浆制品的比例分别达到86.18%、

[17]8 88.14%和66.11%。长期接受凝血因子类产品（产品中病毒含量大于10geq/ml时产生抗体，

3.5 [18]小于10geq/ml不产生抗体）治疗的患者体内抗B19抗体显著升高。大约60%的血浆池包28[19]含10到10genome copy equivalents(1gce相当于1.02+0.13 IU,international units)。

68 经S/D处理的血浆仍有23％含有B19 DNA且滴度高达10-10geq/ ml，而混合血浆中IgG滴度

[17]约为44 IU/mL不足以中和抗原。目前美国食品药品监督管理局已规定对血浆库进行B19病

4毒DNA检测,对于B19病毒DNA浓度超过10拷贝/ml的血浆库将废弃不予使用，如果高病毒载量

的捐赠者血浆在混浆前没有被及时去除的话，将会有5%到15%的血浆池不能使用，造成严重

[20]损失。

2．B19病毒不同基因型检测

目前把B19病毒分为三种基因型，基因Ⅰ型，A6和Lali（基因Ⅱ型）和最先在法国分离

[21]出的V9（基因Ⅲ型），其中基因Ⅱ型10.8%的编码蛋白序列与Ⅰ型不同。在Ⅷ因子产品中，

75 81%的感染型是基因Ⅰ型，14%的感染型是基因Ⅱ型，病毒载量分别达到10和10geq/ml。不

同基因型感染后，症状与宿主先天或后天的体质有关，与基因型无明显的相关性，但在检测[8]

方面略有不同，目前已有两种定性实时荧光PCR试剂盒在欧洲商业化用于血浆检测，Roche LC虽然灵敏度高，但不能检测出第Ⅱ基因型病毒，而ArtusB19 PCR试剂盒可检测出第Ⅱ基因型和代表Ⅲ基因型的质粒D91.1,总体来说，B19病毒变异并不多，需扩大8倍才能看出来，可被

[22]认为是一个少量变异的家族。

3.血制品中B19病毒的去除/灭活

血液制品的病毒灭活方法主要有物理法和化学法。物理法中常用的热处理法有湿热法(巴斯德法)、干热法(60℃ 72 h，80℃ 72h)、蒸汽加热法（将湿润的冻干产品暴露于60℃、1119mPa的热蒸汽中进行病毒灭活10h）、纳米膜过滤等方法。化学法中较常用的有低pH法、有机溶剂/表面活性剂法(S/D法)等。

3.1 传统病毒灭活工艺：在生产白蛋白的过程中，B19病毒对液体加热敏感，但在生产

[23]静注免疫球蛋白时，B19病毒在60%蔗糖浓度下，液体灭活60℃1小时，并不敏感；干热处

理能有效灭活HIV和肝炎病毒，但病毒灭活效果受制品水份残留量、配方（如：蛋白质、糖、盐、氨基酸含量)以及冰冻和冻干时间的影响,同时湿度也会影响B19病毒对干热的敏感性，

[19]低湿度会加强病毒的抵抗力，一般情况下,干热处理1，2和3小时后，病毒感染性分别下降

1.5,2.8,3.8log，但在有蔗糖存在下，B19病毒就不能被很好的灭活，如凝血因子制备工艺研究中采用80℃、72h加热，该法能十分有效地灭活HIV和肝炎病毒，但对B19病毒无效；蒸汽加热法、S/D、低pH法对无脂包膜病毒灭活效果也不如对脂包膜病毒灭活效果好，使B19病毒成为血制品的主要污染病毒。

3.2 新的病毒灭活工艺

3.2.1 纳米膜过滤：纳米膜过滤法，与S/D法或低PH法相结合可灭活部分对热稳定的无

[24]包膜病毒。Yokoyama等报道B19病毒在0.3M甘氨酸存在，pH6.2的情况下可形成聚合体，被

35nm滤膜除去7.5log，而在其他氨基酸，乙酸铵或PBS中去除很少，由此推测B19的去除并不是依靠形成抗原-抗体复合物，而是甘氨酸使病毒聚合，尺寸变大，进而通过35nm的滤膜被去除。但研究发现此法应用于工业生产时膜孔径大小的稳定性不好，且高分子及高粘度制品

[2]不适合用纳米膜过滤法。

[25]3.2.2 光化学法：近年来光化学灭活法成为对病毒灭活的研究热点，在需灭活的血液

制品中加入化学光敏剂，光敏剂与病毒DNA相结合，在一定的光辐射剂量下，对病毒灭活达到很好的效果。然而病毒灭活后光敏剂的去除及光敏剂的潜在致畸作用仍是困扰人们的问

[26]题。目前亚甲基蓝光化学法灭活单份新鲜冰冻血浆已进入实际应用阶段，但此法对无包膜

病毒效果不好。

3.2.3 短波紫外线灭活：紫外线杀菌作用显著，可使DNA、RNA的碱基生成二聚体或加成物而抑制病毒复制，病毒下降滴度与光辐射强度及暴露时间有关。通常，紫外线可分为3个波段: A波段320～380nm(UVA),B波段290～320nm(UVB),C波段190～290nm(UVC)，其中短波紫

[27]外线UVC对病毒灭活效果最好。以前紫外灭活普遍被认为对血浆蛋白损伤较大而一度被搁

置。最近不断有研究发现，在很好的掌握辐射剂量和暴露时间时，短波紫外线对病毒，尤其是无包膜病毒可达到很好的灭活效果，在不加光保护剂的情况下对血浆蛋白损伤也不大。

[28]J.Wang等报道了一种新的紫外灭活仪在短时间内就能有效灭活病毒，尤其是无脂包膜病毒，同时对血浆蛋白不会造成损伤。这种紫外灭活仪设计的围绕灯管的螺旋形结构使血浆料

[29]液在压力泵的推动下形成涡流，进而使每一部分液体分送速率相同，所受辐射均匀，从而

达到短的暴露时间，在不需添加任何光保护剂的情况下，无包膜病毒B19灭活大于4log值，制品蛋白检测不到损伤，蛋白回收率高。本实验室研究发现，应用该紫外灭活仪对加入无包

222膜病毒的静注免疫球蛋白、凝血VIII因子和凝血酶原复合物进行90J/m，135 J/m，200 J/m

等剂量下的灭活辐射处理，病毒滴度下降达4log值以上，且处理后的血液制品蛋白质量符合药典要求。该灭活仪特殊的灯管结构如图1所示

Fig 1.Struc

图 1 UVC灯管装置，螺旋型通道外侧是聚四氟乙烯材质的半圆形，内侧是石英玻璃的直方形。螺旋形通道围绕一杆状紫外灯光源，紫外线可穿透通道内侧照到通道外侧。由于灯管装置的螺旋型结构，料液不是以层流的方式通过，而是形成二级漩涡，即涡流。这种设计方式使料液单次通过所受的辐射剂量就可有效灭活病毒。UVivatec的技术原理：可控辐射分布；强烈的流体径向混合；减少滞留时间；可抛弃型模块；结实可扩展模块，有不同的生物制药生产规模；有效的病毒灭活，最小的蛋白损伤。

Fig 1.Structure of coiled tube reactor of UV irradiation apparatus, a helical channel is formed with the semicircular outer side consisting of Teflon and the straight inner side of quartz glass. The helical channel can be irradiated from the inside to the outside by a rod-shape UV light source placed inside the tube. A flow no longer passes the UV lamp linearly but helically through the coiled channel, helical flow guidance leads to the formation of secondary vortices, known as Dean vortices. The systems are designed in such a way that a single flow through the module is normally enough to achieve a sufficient dose for efficient viral inactivation. Principle of the UVivatec technolog: controlled distribution of radiation; strong radial intermixing of fluid; minimised residence times; robust and scalable module; disposable modules at different scales in biopharmaceutical manufacturing; very effective inactivation of viruses with minimum protein damage.

4.结语

人细小病毒B19具有普遍易感性，对免疫力较低的患者具有潜在的致病威胁，献浆员含病毒的单个单位血浆有使整个血浆池污染的潜在危险。中和性抗B19抗体可阻止病毒与细胞的结合,但是否具有对B19病毒感染的保护作用尚不清楚，需要进一步研究。科技进步与发展使生物医学领域日新月异，对血液中已知和未知病毒的检测与灭活/去除工艺研究也不断深入，以期更大程度上保证患者健康。目前国内对献浆员人细小病毒检测并没有纳入法定检测项目，使血制品存在安全隐患。基于此，开发研制出一种新的病毒灭活工艺迫在眉睫，在众多灭活病毒机制中，短波紫外线对无包膜病毒的灭活优势凸显出来，有很好的应用前景，越来越引起人们的重视，也为我们提供了新的思路和方法。

参 考 文 献

[1] Henriques I, Monteiro F, Meireles E, et al. Prevalence of parvovirus B19 and hepatitis A virus in Portuguese blood donors. Transfusion and Apheresis Science, 2005, 33:305-309.

[2] Expert committee on biological standardization. Guidelines on Viral Inactivation and Removal Procedures

Intended to Assure the Viral Safety of Human Blood Plasma Products, Geneva, 2001.

[3] Cossart YE, Cant B, Field AM, et al. Parvovirus-like particles in human serum. The Lancet, 1975, 1:72-73.

[4] Corcoran A, Doyle S. Advances in the biology, diagnosis and host-pathogen interactions of parvovirus B19. Journal of Medical Microbiology, 2004, 53:459-475.

[5] Weimer T, Streichert S, Watson C, et al. High-titer screening PCR: a successful strategy for reducing the parvovirus B19 load in plasma pools for fractionation. Transfusion, 2001, 41:1500-1504.

[6] Anderson LJ, Tsou C, Parker RA, et al. Detection of antibodies and antigens of human parvovirus B19 by enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol, 1986, 24:5222- 5261.

[7] 魏强,李岩,王健伟,等.吉林省供血者人类细小病毒B19 IgG 抗体的调查.中华实验和临床病毒学杂志,2006,20(2).

[8] 张念华，杜振兰,赵英会.山东鲁西地区部分献血员人细小病毒B19流行病学调查.现代预防医学,2009,36(1).

[9] Tolfvenstam T, Papadogiannakis N, Norbeck O, et al. Frequency of human parvovirus B19 infection in intrauterine fetal death. Lancet, 2001, 357:1494-1497.

[10] 钱筠, 翟艳苓,吴轶苹.人细小病毒B19与特发性血小板减少性紫癜.中华实用诊断与治疗杂志,2008,23(1).

[11] 常增民,王清.人细小病毒B19感染在类风湿性关节炎发生中的作用.齐鲁医学杂志,2007,22(6).

[12] 卢银平,曹伟,洪梅,等.反复自然流产孕妇流产组织中人细小病毒B19的检测意义.中国计划生育学杂志,2007,136(2).

[13] Yunoki M, Tsujikawa M, Urayama T, et al. Heat sensitivity of human parvovirus B19. Vox Sanguinis, 2003, 84:164-169.

[14] Ros C, Baltzer C, Mani B, et al. Parvovirus uncoating in vitro reveals a mechanism of DNA release without capsid disassembly and striking differences in encapsidated DNA stability. Virology, 2006, 345:137-147.

[15] Bliimel J, Schmidt I, Willkommen H, et al. Inactivation of parvovirus B19 during pasteurization of human serum albumin. Transfusion, 2002, 8(42).

[16] Blumel J, Schmidt I, Effenberger W, et al. Parvovirus B19 transmission by heat-treated clotting factor concentrates. Transfusion, 2002, 11(42).

[17] Schmidt I, Blumei J, Seita H, et al. Parvovirus B19 DNA in plasma pool and plasm derivatives.Vox Sanguinis, 2001, 81:228-235.

[18] Baylis SA, Shah N, Minor PD. Evaluation of different assay for the detection of parvovirus B19 DNA in human plasma. Journal of Virological Methods, 2004, 121:7-16.

[19] Prikhod ko GG, Vasilyeva I, Reyes H, et al. Evaluation of a new lightCycler reverse transcription-polymerase chain reaction infectivity assay for detection of human parvovi- rus B19 in dry-heat inactivation studies. Transfusion, 2005, 6(45):1011-1019.

[20] Thomas I, Giambattista D, Gerard C, et al. Prevalence of human erythrovirus B19 DNA in health Belgian blood donors and correlation with specific antibodies against structural and non-structu- ral viral proteins. Vox Sang, 2003, 84:300-307.

[21] Baylis SA. Standardization of nucleic acid amplification technique (NAT)-base assays for different genotypes of parvovirus B19:a meeting summary. Vox Sanguinis, 2008, 94:74-80.

[22] Cohen BJ, Candhi J, Clewley JP. Genetic variants of parvovirus B19 identified in the United Kingdom: Implication for diagnostic testing. Journal of Clinical Virology, 2006, 36:152-155.

[23] Yunoki M, Urayama T, Tsujikawa M, et al. Inactivation of parvovirus B19 by liquid heating incorporated in the manufacturing process of human intravenous immunoglobulin preparatious. British Journal of Haematology, 2004,128:401-404.

[24] Bonvicini F, Gallinella G, Gentilomi GA, et al. Prevention of Iatrogenic transmission of B19 infection:

篇三：一例犬细小病毒病

一例犬细小病毒病的诊治

学生姓名：740822225

指导老师：740822225

摘要：在本文中简单的阐述了犬细小病毒病的特点和预防重点。介绍的病例是我在宠物医院实习时所遇到的。犬主人把病犬送到宠物医院时，犬呕吐不腹泻，过了几天后出现腹泻现象，粪便呈番茄汁样、混有血、并有特殊刺鼻腥味。病犬很快呈现脱水症状，此时病犬表神沉郁、食欲废绝。经过对症治疗止吐、止泻、补水用药，还有抗病毒、控制继发感染用药后病情渐渐转好康复。犬细小病毒病是犬的高发病，不及时治疗很容易死亡，给人们带来了经济损失。

关键词：犬细小病毒病；诊治

Case of diagnosis and treatment of canine parvovirus

disease

Student name:Gang Chen

Instructor:Wenjie Jin

Abstract：In this article simple describes the characteristics of canine parvovirus disease and prevention focus. Cases described in the pet hospital I encountered internship. Dogs to the pet dog owner to the hospital, the dog is not vomiting, diarrhea, and after a few days after the diarrhea, stool samples were tomato juice, mixed with blood, and a special pungent smell. Dogs will soon show symptoms of dehydration, then the table of God depressed dogs, absolute waste of appetite. After symptomatic treatment antiemetic, antidiarrheal, pay administration, as well as anti-virus, control of the disease after treatment of secondary infection gradually turn for the better recovery. Canine parvovirus disease is the high incidence of dog, not treated in time is likely to die, to bring the economic losses.

Key words：Canine parvovirus，diagnosis and treat

一、综述

随着人们生活水平的提高，饲养宠物犬成为越来越多的人生活中不可缺少的调节元素，特别是在城市里，由于犬的饲养量越来越大，犬病防治也倍受各层人们所关注。做好犬病防治工作意义非常重大，特别是关于狂犬病、犬弓形虫病等一些人畜共患病的有效防治工作必须做好。1977年Eugster首先通过电镜在患腹泻的幼犬粪便中发现犬细小病毒，到1979年，犬细小病毒性肠炎或心肌炎几乎遍及全世界。1980年以来，我国先后有发生本病的报道。犬细小病毒病是犬的一种急性传染病，本病主要通过直接或间接接触而感染。临床上病犬多以出血性肠炎或非化脓性心肌炎为主要特征，且以出血性肠炎病例较多，其感染率可高达100%，病死率达40%～60%。一般引进纯品种犬感染率和致死率较高，本地犬则相对较低。病犬是本病的主要传染源，健康犬多因接触病犬及其排泄物如粪、尿、呕吐物等而感染。

1.病原

犬细小病毒属于细小病毒科细小病毒属，是一种DNA型病毒。病毒粒子呈圆形、椭圆形，无囊膜。犬细小病毒对多种理化因素和常用消毒剂具有较强的抵抗力。病毒主要存在于病犬的粪、尿、呕吐物、唾液中。犬细小病毒对外界抵抗力较强，耐热性也强，在60度的条件下可存活1小时，在80度的条件下仍可耐活30分钟，在偏酸和偏碱的环境中仍有传染性。0.5%的福尔马林、3%的氢氧化钠、次氯酸钠、丙内酯、氧化剂和紫外线均可将其灭活。

2.流行病学

此病的流行无明显季节性，以冬季及气温变化较大时易发。从我处接诊的病例观察：以前本病与犬瘟热的发生似有一定的周期性，一般是每间隔2年即有一个发病高峰，而从2008年～2009年发生本病的情况看发生犬细小病毒病和犬瘟热病均较多，且基本没有所谓的周期性及季节差别。各种年龄的犬均可感染，但以刚断乳至90日龄的犬发病较多，病情也交严重据临床发病犬的种类来看，纯种犬及外来犬比杂种犬发病率高。

3.临床症状

本病在临床上主要以两种形式出现，即肠炎型和心肌炎型。

3.1肠炎型

潜伏期为7天～14天，出现临床症状时病犬明显减食或不食，一般先呕吐后腹泻，

粪便呈黄色或灰黄色、内含多量粘液和伪膜。病后2天～3天，粪便呈番茄汁样、混有血丝、并有特殊刺鼻腥味。病犬很快呈现脱水症状，此时病犬表神沉郁、食欲废绝、体温升至40℃以上、饮水量增加，病犬到后期体温低于常温，可视粘膜苍白，尾部及肛门周围常被粪便污染，严重时肛门松弛并开张。此病型各种日龄的犬均可发生、以青年犬发生较多。

3.2心肌炎型

病犬无明显临床症状，往往表现为突然发病、呼吸困难、心力衰竭、可视粘膜苍白、体质衰竭、往往来不及治疗即在短时间内死亡，且以幼犬发生此病型较多。

4.病理变化

4.1肠炎型

在病犬小肠下段，特别是空肠和回肠的粘膜严重剥脱，呈暗红色；肠内容物中常混有大量血液。肠淋巴结肿大，由于充血、出血而变为暗红色。组织学检查时可见小肠粘膜上皮坏死和脱落，绒毛萎缩，隐窝萎缩或扩张，数目减少。肠上皮细胞内有核内包涵体。

4.2心肌炎性

心肌或心内膜有非化脓性坏死灶，心肌纤维严重损伤，常见出血性斑纹。心肌损伤部位的细胞内常见核内包涵体。

5.诊断

通常可根据上述流行特点、临床症状、特别是从排出粪便的特征性变化上可以初步诊断为犬的细小病毒病。采用进口韩国安捷的犬细小病毒病检测试纸检测可确诊。早期病犬未见明显症状时通过检测试纸测试对病犬的即时治疗很有意义。

6.治疗

6.1对症治疗

6.1.1止吐

本病患犬会出现比较顽固的呕吐，在发病初期止吐不利于病毒的排出，应在发病2 d后再止吐。此时止吐应以减缓胃肠蠕动的药作为首选药，如溴米那普鲁卡因（爱茂尔）、山莨菪碱（654-2），必要时可使用小剂量的氯丙嗪。在疾病恢复期，病犬呕吐次数明显减少时可使用甲氧氯普胺(胃复安)，除达到止吐的目的外，还具有能通过增强胃蠕动而

加强食欲的效果。

6.1.2止泻

可口服次硝酸铋并配合穴位注射(后海穴注射卡那霉素)，效果良好。

6.1.3止血与输血

血便消除是本病治愈的主要标志，止血是肠炎型细小病毒病治疗中的关键环节。可采用静滴维生素K1、维生素K3、酚磺乙胺（止血敏）、肾上腺色综（安络血）等。一般在液体中加入上述止血药的一种或两种即可，对严重的出血患犬可肌注凝血酶或输入犬源血浆，输血浆按2~5 ml/kg，缓慢静滴，输入血浆法操作简便，临床效果好。

6.1.4强心

当病犬出现心力衰竭时肌注安钠咖或尼可刹米2~4 ml。

6.2支持疗法

6.2.1补充体液

在临床上，犬细小病毒病会出现迅速脱水的症状，所以补液是该病治疗过程中至关重要的一个环节。输液是最好的补液方法。在临床上可根据皮肤弹性的变化来决定补液量。皮肤弹性的检查可选择背部皮肤，用手捏起皮肤形成皱褶后松开，正常皮肤可在1~2 s后复原，而轻度脱水时需2~3 s，重度脱水需3~5 s，轻度脱水时脱水量约占体重的5%，中度脱水时约为体重的7%，重度脱水时约为9%。补液量可以此推算(幼犬可稍加大量)，另外，患犬的临床表现也能反应补液量的恰当与否，一般病犬精神变好，心跳均匀有力，并开始排尿时说明补液已足够，万万不可生搬硬套决定输液量。输液速度不可过快，应根据犬的体重大小、年龄、体质好坏、输液目的、心脏状况、外界温度而定。正常可按10ml/min补给。在补液剂的选择上，犬细小病毒感染的患犬一般为等渗性脱水，可选用复方氯化钠（林格氏液）和5%葡萄糖注射液，按1∶1的比例静滴。

6.2.2抗病毒、控制继发感染

抗病毒可用双黄连、黄芪等中药，也可用丙种球蛋白，控制继发感染可选用氨苄青霉素、卡那霉素，氧氟沙星等。

6.2.3给予能量合剂、提高抵抗力

能量合剂主要指葡萄糖、维生素C、辅酶A、三磷酸腺苷、钾盐等成分，可在输液时加入。

6.2.4调整酸碱平衡

初期呕吐为主，导致碱中毒，可用醋10~20 ml内服；中后期腹泻为主，导致酸中毒，

可用5%碳酸氢钠5~20 ml，加到5%葡萄糖注射液100~500 ml中静滴。

6.2.5补充电解质

在发病初期可静滴10%氯化钙或10%葡萄糖酸钙1~2 ml/kg(注意控制速度，实行动态监护)，既可强心止血又可兼顾病初的高血钾症。随着病程的发展，病犬长期不进食易引起钾离子摄入太少，以及呕吐腹泻引起钾离子流失过多而形成中后期的低血钾症，故应补充钾离子。但补钾应注意量不可太大，速度不可太快，一般每天按0.1~0.2 g/kg。补钾速度不超过1 g/h，另外必须做到“见尿补钾”。

6.2.6激素疗法

可在输液中加入地塞米松等糖皮质激素，速度要慢。糖皮质激素虽能增加某些抗生素的活性，提高犬抵抗力，但不可以长期使用。

6.2.7加强护理，改善饲养条件

应隔离病犬，注意对病犬保暖，保持犬舍清洁、干燥；对病犬污染的犬舍饲具、用具、运输工具进行紧急消毒，消毒剂可采用2%~4%的NaOH、5%~6%次氯酸钠等；早期应让病犬禁食、禁水，待病犬不吐时可喂少量流食(牛奶、小米粥等)，切不可在恢复期就喂以大量肉食类。

7.预防

7.1定期做好犬的免疫接种工作

目前市面上的犬用疫苗主要分国产和进口的两类，从比较使用的效果看，正规渠道进口疫苗的保护率相对较高，一般建议用户使用进口苗，用户可根据自身及犬的经济价值情况而选择使用。具体使用时间参照疫苗生产厂家建议的免疫程序。我处使用的法国梅里亚犬六联苗要求在犬40日龄～60日龄时首免，间隔3周～4周后进行二免，再过3周～4周后进行3免，另外做好狂犬疫苗的预防接种工作，而对成年犬则每年在相应的时间段各接种一次即可，从几年使用的情况记录看，其保护率达90%以上。

7.2防止病原传播

犬群中一旦发生本病，应立即进行病健隔离，搞好犬舍及其周围环境的卫生工作。本病虽可治愈但康复犬粪便中长期带毒，因此犬群中一旦发生过此病，则很难彻底清除，为尽可能避免在以后的犬群中发生本病，须对犬舍和各种用具进行多次反复清洗、消毒。选用3种～4种消毒剂如2%～4%烧碱、0.5%过氧乙酸或聚维酮碘消毒液轮换使用。对无治愈可能的犬，应尽早扑杀，焚烧深埋。

篇四：32例犬细小病毒感染的诊断与治疗

目 录

摘要 ……………………………………………………………………………………2

综述 ……………………………………………………………………………………3

1 疾病概述 ……………………………………………………………………3

2 病原学 ………………………………………………………………………3

3 流行病学 ……………………………………………………………………4

4 临床症状 ……………………………………………………………………4

5 病理变化 ……………………………………………………………………5

6 诊断 …………………………………………………………………………6

7 治疗 …………………………………………………………………………8

8 预防 …………………………………………………………………………9

实验部分 ………………………………………………………………………………11

1 材料与方法……………………………………………………………………11

1.1 实验动物…………………………………………………………………11

1.2 实验材料 ………………………………………………………………11

1.3 实验方法 ………………………………………………………………12

2 结果与分析 …………………………………………………………………15

2.1 诊断结果 ………………………………………………………………15

2.2 治疗结果 ………………………………………………………………17

2.3 结果分析 ………………………………………………………………17

3 讨论与小结 …………………………………………………………………18

3.1 预防 ……………………………………………………………………18

3.2 诊断与治疗 ……………………………………………………………19

3.3 护理 ……………………………………………………………………19

参考文献 ………………………………………………………………………………20

32例犬细小病毒感染的诊断与治疗

摘 要：犬细小病毒病是由犬细小病毒引起的一种急性传染病。病犬以呕吐、腹泻、番

茄酱样血便为主要特征。根据临床症状，常将犬细小病毒病分为心肌炎型和肠炎型，肠

炎型犬细小病毒病为常见类型。本试验针对32例被疑似犬细小病毒病病例，通过HA-HI

试验和犬细小病毒快速诊断试纸两种诊断方法对其进行确诊，并对两种诊断方法进行了

比较。结果表明，快速诊断试纸方法检出率最高，达到71.9%。对32例病例进行针对

性治疗，以注射五联血清、犬细小病毒单抗、补液和防止继发感染为主，其治愈率较高，

达到73.9%。

关键词：犬细小病毒感染；诊断；治疗

The diagnosis and treatment of canine parvovirus infection

Abstract

Canine parvovirus (CPV) infection was caused by Canine parvovirus. It was an acute

infectious disease. Its clinical symptoms included vomite, diarrhoea and the blood feces just

like ketchup. According to the clinical symptom, Canine parvovirus (CPV) infection is often

divided into disease myocarditis type and enteritis type. And the enteritis type is a familiar

one.32 dogs were diagnosed as CPV by two methods, which were HA-HI experiment and the

canine parvovirus diagnostic test paper. The results showed the method of canine parvovirus

diagnostic test paper has the highest inspected percentage，reached to 71.9 percent. Firstly, the

dogs were treated by injecting triple serum and monoclonal antibody against canine

parvovirus. Then, other measures were took, including fluid resuscitation and preventing

secondary infections. Cure rate of the dogs was 73.9 percent.

Key words：Canine parvovirus infection; diagnosis; treatment

第一部分 综 述

1. 疾病概述 1978年，澳大利亚的Kelly和加拿大的Thomson等同时从患肠炎的病犬粪便

中分离获得的犬细小病毒（Canineparvovirus，CPV）。其后，美国、英国、德国、

法国、意大利、俄罗斯和日本等国也相继发现了该病毒。血清学调查显示，CPV阳

性血清在欧洲最早可以追溯到1974-1976年；在美国、加拿大、日本和澳大利亚

可以追溯到1978年。为了区别于1967年由Binn等[人从健康犬粪便中分离到的

犬极细小病毒（Minutevirusofcanine，MVC）（习惯也上被叫做CPV-1）而将后来

发现的病毒命名为犬细小病毒2型（CPV-2）。CPV-2与CPV-1在致病性及抗原性

上具有显著的差异。临诊上，CPV-2有两个表现类型：肠炎型和心肌炎型，也有报

道一只犬兼有两种症状。肠炎型主要表现为先呕吐，后急性出血性肠炎、白细胞

显著减少，但目前临床上有相当大比例患犬白细胞表现正常或升高；心肌炎型主

要见于8周龄以下的幼犬，常突然发病，数小时内死亡。试验证明，CPV-1可以导

致小于4周龄的幼犬发病并可以致其死亡，也可以引起母犬的繁殖障碍。

在我国，梁士哲等于1982年首次报道了类似犬细小病毒感染性肠炎。次年，

徐汉坤等正式报道了该病的流行。近年来，随着我国工作犬（军犬、警犬、导盲

犬等）、实验用犬和宠物犬饲养量的大幅增加，犬细小病毒感染日趋严重，给养

业犬带来了重大的经济损失，成为危害养犬业重大疫病之一。因此，对本病的研

究也随之增多了起来。

。

2. 病原学

犬细小病毒（CPV）属于细小病毒科、细小病毒属，为单股线状无囊膜的DNA病

毒[5] ，约5000bp[6]。病毒粒子呈圆形或六角型，直径约20～24nm，是动物病毒群中最

小者，呈20面体对称。本病毒对外界环境的抵抗力较大，粪便中的病毒粒子在20℃条

件下可以存活12个月以上，80℃处理60分钟才能失去活性。对乙醚、氯仿、醇类和去

氧胆酸盐有抵抗性，pH3处理1小时并不影响其活力，在室温下能存活3个月。对甲醚、

β-丙内脂、羟胺和紫外线敏感，能使之失活。研究表明，细小病毒的宿主谱是由病毒衣

蛋白决定。细小病毒属的各成员衣壳蛋白在基因结构、核苷酸序列上极其相近，但在1～

2个氨基序列的变化即可引起宿主谱的改变。如CPV和猫泛白细胞减少症（FPV）的宿

主决定簇至少有两个氨基酸差异[1,2,3]CPV含有三种多肽：VP1（70～90KD）、VP2（62～

76KD）、VP3（39～69KD），VP2是构成衣壳蛋白的主要成分，是具有血凝活性的物

质。病毒在4℃、pH=6.0～7.2条件下能牢固凝集猪、猴的红血球。此外，发现病毒结合

红细胞过程异于宿主细胞，是非感染性的，也就是说，即使毒株丧失了血凝性，它仍然

保持了对宿主细胞的感染性。编码CPV的主要抗原决定簇可诱导集体产生中和抗体；

本病毒在多种不同类型的细胞内增殖（不同于猫泛白细胞减少症），如猫胎肾原代细胞，

犬胎肾、脾、胸腺和肠管原代细胞，小貂肺细胞系（CCL – 64），牛胎脾细胞等。但目

前通常用MDCK和F81等传代细胞分离培养病毒。

3. 流行病学

3.1 易感动物

犬是主要的自然宿主，其他犬科动物，如郊狼、丛林犬、食蟹狐和鬣狗等也

可以感染。随着病毒抗原漂移，病毒已经可以感染猫小熊、貉等动物。

3.2 传染源

病犬是主要传染源，呕吐物，唾液，粪便中均有大量病毒。康复犬仍可长期

通过粪便向外排毒。有证据表明人，虱，苍蝇和蟑螂可成为CPV的机械携带者。

健康犬与病犬或带毒犬直接接触，或经污染的饲料和饮水通过消化道感染。

3.3 传播途径

主要通过直接接触，经消化道传播。病毒随粪便、尿液、呕吐物及唾液排出体外，

污染食物、垫料、食具和周围环境。犬因食用污染的饲料而引起感染。

3.4 流行特点

3.4.1 流行形式

犬细小病毒病多为散发，在养犬比较集中的区域常呈地方流行性。

3.4.2 季节性

该病的发生无明显的季节性，一般夏秋季节多发，据统计5月份是该病发病最多的

季节。这一点可在临床上得到进一步得验证。

3.4.3 促发因素

天气寒冷、气温骤变、拥挤、卫生水平饲养管理条件骤变，长途运输等因素均可

引起该病的发生。有并发感染时可加重病情和提高死亡率。

4.临床症状

根据临床症状，常将犬细小病毒病分为心肌炎型和肠炎型。

心肌炎型犬细小病毒病发病率较低，临床病例很少见。常发生于3至12周龄的幼

犬，死亡率较高。病犬突然发病，离群呆立，脉搏快而弱，呼吸困难，肌肉震颤，四肢

末端和耳、鼻发凉，可视黏膜发绀，体温升高。频繁呕吐、腹泻、脱水、衰竭、直至死

亡。心电图R波降低，S-T波升高。病犬常因急性心力衰竭而死亡，只有极少数轻度病

例可以治愈，致死率为 60%～100%。病犬一般在24h内死亡。由于大多数母犬有母源

抗体，母犬移行抗体给幼犬，所以此类病例较为少见。

肠炎型犬细小病毒病较为常见，在临床经常可见的细小病毒感染一般为该类型病例。病犬主要表现为剧烈呕吐和腹泻交替进行。病初精神不振，拒食，心率快速，继而出现呕吐，开始是未消化的食糜，随后为带泡沫和黏液的胃液和黄绿色的胆汁。病犬有腹痛表现，严重腹泻。初期腹泻物呈灰黄色，带有大量的黏液和脱落的肠黏膜，而后变成番茄酱状暗红色的稀粪，有特殊的腥臭味。中后期全身发臭。发病犬一般在发病早期体温升高，甚至达到39.5℃以上，但中后期体温不高，无发热症状，精神沉郁，衰落无力，反应迟钝，眼球由于脱水长凹陷，皮肤弹性差，鼻镜干燥甚至龟裂。可视黏膜初期发绀，中后期由于贫血常为苍白色。口腔干燥，舌面有苔。心功能衰竭，并出现心率不齐和喘息。病程一般为5天左右[7]。

5. 病理变化

1. 肠炎型

自然死亡的病例均显消瘦，腹部卷缩，眼球下陷，可视粘膜苍白，眼角常有灰白色粘稠分泌物。肛门有血样稀便流出。皮下组织因脱水而显干燥。血液粘稠呈暗紫红色。全身肌肉淡红色。少数病例可见腹部液体增量。

胃和十二指肠空虚或有稀薄液体，粘膜轻度潮红、肿胀，被覆较多粘液。空肠和回肠的病理变化最为严重并且具有特征性，表现肠壁呈程度不同的增厚，肠管增粗，肠腔狭窄，内容物充积血粥样内容物或混有紫黑色血凝块；粘膜潮红、肿胀，散布斑点状或弥漫性出血，并形成厚的粘膜皱褶，集合淋巴小结肿胀。盲肠、结肠和直肠的内容物稀软，呈酱油色，具腥臭味，粘膜肿胀，散在少量出血点。肝脏肿大，呈紫红色或红黄色，质地脆弱，切面有多量凝固不良的血液。胆囊膨大，内贮多量绿色胆汁，粘膜光滑，呈黄绿色。脾脏轻度肿大，偶见出血性梗死灶。

心脏呈现右心扩张，心内、外膜偶见点状出血，心肌黄红色、柔软。心包液稍增量。 镜检小肠绒毛短缩，倒伏或断裂，粘膜上皮细胞变性坏死、脱落。未脱落的肠腺上皮细胞核内可见嗜酸性或噬碱性包涵体。淋巴细胞、胸腺细胞和网状细胞内偶见包涵体。电镜检查在一些核内可见颗粒状包涵体和病毒粒子。

心肌纤维颗粒变性，肌束间轻度出血或水肿。

2.心肌炎型

此型患犬长缺乏或仅表现轻度的小肠炎变化。主要病理变化在肺和心脏。肺膨满，呈灰红色或花斑状，肺胸膜散发斑块状出血，触诊肺组织较坚韧。膈叶下缘常见少数紫红色实变区，肺门与前纵膈周围的结缔组织伴发胶样水肿。气管和支气管充满泡沫样液体。肺切面富有血液，挤压切面见有较多量的血样液体流出。镜检肺泡壁毛细血管充血，肺泡隔因间质细胞增生和巨噬细胞浸润而增宽，肺泡充满浆液和脱落的肺泡上皮细胞或

篇五：犬细小病毒病的诊断与治疗

犬细小病毒病的诊断与治疗

摘要：细小病毒病是由细小病毒 （CPV）引起的一种致死率极高的传染病。在治疗上，一般采用对症疗法和支持疗法，结合特异性疗法，在诊治犬细小病毒病时，关键就是要把握好初步诊断关与及时对症治疗关，这样就有可能获得较好的临床治疗效果。但平时的饲养管理也是很重要的，坚持进行疫苗注射。

关键词：犬；细小病毒；诊断；治疗

1977年，Eugester在美国首次从患出血性肠炎病犬的粪便中发现了犬细小病毒。以后许多国家和我国（1980年）均报道了本病的发生。犬细小病毒主要感染犬，尤其2-4月龄幼犬多发。该病一年四季均可发生，以春、秋多发。天气变化、饲养条件不好以及并发感染等，可使病情加重，加大死亡率。

犬细小病毒病已经成为危害宠物犬健康的一个重要疾病。其发病率为20%-100%，死亡率为10%-100%，但在精心治疗与护理下死亡率可大大降低。因此，犬细小病毒病的诊断与防治在兽医临床上有着重要的意义。 犬细小病毒对犬有高度的接触性的传染性，无论是什么年龄的犬都可以感染。但以刚刚断乳至90日龄的犬发病比较多，病情会较严重。幼犬有的可呈现心肌炎症状然后突然死亡。依据临床发病犬的种类来看，纯种犬和外来犬比土种犬的发病率要高。

11．发病情况

畜主述：12月10日从本市宠物市场买回，据说已于12月8日已注1.1病例：红贵宾犬；雄性； 4月龄左右；体重：2.3千克 射荷兰英特威公司的犬二联疫苗。头两天精神状态一直很好。12月12日周六，早上喂牛奶、狗粮。下午两点开始出现呕吐，自己给其喂服一支庆大霉素。到下午近五点，已呕吐3次，且粪便稀软。即送来英牛宠物就医。就诊时间：2008年12月12日傍晚。

2.临床症状

经临床检查，该红贵宾犬突发呕吐，食欲废绝，精神沉郁，继而出现腹泻，没有咳嗽，出现少量眼屎和鼻涕，测量体温为39.3℃。

2.1试纸检测

采用韩国医学科学院实验室动物中心研制的犬细小病毒快速诊断试纸条进行测试：取病犬粪便1g许加生理盐水约5ml充分摇匀静置5min。然后将纸条带有MAX线箭头一端插入粪便上清液中约15秒后取出平放在干净的桌面上，5min后如果出现两条红线的为阳性，只出现一条红线的为阴性。经韩国进口快速诊断板检测：这个病例的CDV为阴性，CPV为阳性。初诊为犬细小病毒病。

图二：出现两条红线的为阳性，只出现一条红线的为阴性.

3.治疗

本病是一种致死率极高的传染病，如得不到及时治疗死亡率高达九成以上。一般采用对症疗法和支持疗法，结合特异性疗法。在治疗上，可采

取如止吐、止泻、强心、补液、抗感染，使用单抗或血清，犬用免疫球蛋

白注射液。严格控制饮食等[2]。根据上述病例的症状，基本上可能属于犬细小病毒病感染所致的，似肠炎型。治疗方案见表1。

4．分析与讨论

防治犬细小病毒病，平时的饲养管理也是很重要的。犬食应用市场上品质好、营养素全面的品牌，有助于增强犬的体质与抗病能力[3]。犬舍应安放在通风保暖向阳的地方，避免阴暗潮湿。遛狗的时候应尽量少去草地等有很多犬大小便的地方，不要让爱犬随便跟其他犬接触，尤其是半年内患过犬细小病毒病的犬

平时严格兽医卫生防疫措施，坚持进行免疫注射，但免疫的程序与时机等因素都会影响幼犬的免疫效果[4]。CPV感染的最低抗体保护值为 1:80。

对无母源抗体或不知母源抗体水平的或抗体水平很低的仔犬建议用以下疫苗程序：首次免疫应为42－45日龄注射犬二联疫苗（此疫苗可突破母源抗体的干扰）；间隔15－20日注射五联苗，间隔15－20日注射六联苗；间隔15-20日注射狂犬苗，以后每间隔10－12个月注射六联苗和狂犬苗一次免疫。

对成年犬首次免疫共注射 2 次，每次间隔 3-4 周，以后每年加强免疫 1 次。母犬可在产前 3-4 周免疫接种。以产仔前 1 个月用灭活苗对母犬免疫，所生仔犬 60 日龄首免，75 日龄加强免疫，以后间隔 6 个月免疫 1 次效果最佳，该程序对犬的保护率为 100% [5]。

对有可能处于潜伏期的动物，须先注射高免血清，观察 1-2 周无异常时，再按免疫程序免疫。污染的病犬舍须在彻底消毒并空舍 1 个月后，方可启用。

5.临床症状

5.1肠炎型

潜伏期约7-14天，各种年龄犬均可发生。病初48小时内常显现沉郁，厌食，发热（40-41度）和呕吐。较老的或患病较轻的病犬，体温正常或稍微增高（39℃）。在早期体温通常显著升高和晚期则低于常温，呕吐物是清朗、胆汁样或血染色[6]。在6-24小时后出现严重程度不等的

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