生物牛人请进有人知道数据比对的软件怎么用吗?比如oligo,别的软件也行,总之,能blast一下就行希望有人自己做过，最好能加一些自己的经验之谈！其实上网摆我也会，我是不好意麻烦我的导

生物牛人请进有人知道数据比对的软件怎么用吗?比如oligo,别的软件也行,总之,能blast一下就行希望有人自己做过，最好能加一些自己的经验之谈！其实上网摆我也会，我是不好意麻烦我的导
生物牛人请进
有人知道数据比对的软件怎么用吗?比如oligo,别的软件也行,总之,能blast一下就行
希望有人自己做过，最好能加一些自己的经验之谈！其实上网摆我也会，我是不好意麻烦我的导师，她说要是不会就去问她！
我说的blast不就是核酸序列比对吗！呵呵……

生物牛人请进有人知道数据比对的软件怎么用吗?比如oligo,别的软件也行,总之,能blast一下就行希望有人自己做过，最好能加一些自己的经验之谈！其实上网摆我也会，我是不好意麻烦我的导
我觉得你可能是在问多序列比对的问题,软件一般用ClustalX,或者用在线的ClustalW也可以.
ClustalX的用法是：把你的目标序列放在一个记事本儿里,序列都是Fasta格式的,然后file-load sequence,
然后alignment-do complete alignment
多序列比对就做好了,
关闭的时候点保存就行了；
ClustalW更简单,直接把序列粘贴提交就可以了,网址你google一下就出来了.
Oligo一般用来做引物设计和评估的,另外我也不知道你说的blast与你的问题有什么关系.

ClustalX

一、普通引物对的搜索：
以Mouse 4E（cDNA序列）为例。我们的目的是以Mouse 4E（2361 bp）为模板，设计一对引物来扩增出600－800bp长的PCR产物。
1、点击“Search“菜单中的”For Primers and Probes“命令，进入引物搜索对话框；
2、由于我们要设计的是一对PCR引物，因此正、负链的复选框都要选上，同时选上Compati...

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一、普通引物对的搜索：
以Mouse 4E（cDNA序列）为例。我们的目的是以Mouse 4E（2361 bp）为模板，设计一对引物来扩增出600－800bp长的PCR产物。
1、点击“Search“菜单中的”For Primers and Probes“命令，进入引物搜索对话框；
2、由于我们要设计的是一对PCR引物，因此正、负链的复选框都要选上，同时选上Compatible pairs。
在Oligo默认的状态下，对此引物对的要求有：a、无二聚体；b、3’端高度特异，GC含量有限定，d、去除错误引发引物等。
3、剩下的工作是确定上、下游引物的位置及PCR产物的长度以及引物设计参数。
①单击：“search Ranges”按钮，弹出“Search Ranges”对话框。输入上游引物的范围：1－2000，下游引物的位置：100－2300；PCR产物的长度600－800bp。
②单击“Paramaters”按钮进入“Search Parameters”对话框，对话框种分三个活页，分别是：不同设定，参数以及更多参数。
③在“普通设定”窗口，为我们提供了对引物非常直观的设定方法，从高到低分六个等级，最后还有一个用户定制选项。
④当我们对引物的各种参数的含义及应该设定多大值并不是特别清楚时，就可以直接设定Very high/High等来完成对引物设计参数的设定。
⑤当我们选中“Automatically Change String”后，Oligo会在引物搜索过程中：如果在高等级设定中无法找到引物对时自动降低一个定级来进行搜索，知道找到引物对。在设计反向PCR引物对时，就选中“Inverse PCR”复选框。
⑥我们还可以让引物的长度可以改变，以适应设定的Tm值或PE？（Prime Effitions，引发效率）。也可以限定所选引物对的最大数目。
⑦在“Parameters”窗口中，实际上需要我们改动的只有引物的长度，根据试验的要求作相应的改变，如23nt。其他参数就使用Oligo的默认值，一般无需改变。在“More Parameters“窗口中，一般也无需作任何改变，直接用Oligo的默认值。
4、点击“确认”－“Ok”进入搜索窗口，再次单击“OK”后，Oligo自动完成引物对的搜索，并出现一个搜索结果窗口。显示出得到的引物对数目。
5、点击“Ok”，出现“PrimerPairs”窗口，在窗口中列出了7对引物的简单信息，引物位置，产物长度，最佳退火温度及GC含量。单击“Sort”按钮，可以按产物长度，最佳退火温度及GC含量从小到大或从大到小的顺序排列。
6、点击任意一对引物，在旁边马上弹出一个叫“PCR”的窗口，在窗口中我们可以看到这对引物在模板中的大概位置，最佳退火温度（该温度可以直接应用于我们实际PCR中的第二步退火）。另外还有引物的Tm值，GC含量，引发效率，同时还计算出了产物的Tm值于引物Tm值的差异以及引物间Tm值的差异。一般我们尽量保持前者在20度以内，后者在5－6度以内。点击不同的引物对时，PCR窗口内容同时作相应的改变。
7、要想了解引物的详细信息，如二聚体，发卡结构形成情况、组成、Tm值和错误引发位点等，这时只需点击“Analyze”菜单中的相应命令，就可以分别得到相关信息。例如点击“Duplex Formation”，我们就可以得到上游引物间，下游引物间及上下游引物间形成二聚体的情况。同理，“Hairpin Formation”，“Composition and Tm”，“False Priming Sites”等命令就可以显示出相关信息。所有这些分析的结果都有助于我们从Oligo搜索得到的多对引物中选择最佳的引物对。
需要说明的是，①如果一次搜索得到的引物对太多时，我们可以适当提高选定的条件和规定更合适的搜索范围来减少引物对数；②引物一般尽量不要在3’端或是离3’端太近的位置形成二聚体，同时二聚体的自有能绝对值尽量小于10；3，对于错误引发，在普通PCR中，如果引发效率在160 points以上时，就可能出现杂带，在测序反应中，错误引发效率则应该严格控制在120 points以下。
8、Oligo中每对引物的详细信息可以直接导出为一个文本文件：
首先点击“File”菜单中的“Print/Save Options”，在出现的对话框中的普通设定选中“Selected”；在“Analyze I”中选择需要保存的信息，在“Analyze II”中选中PCR。
单击确定按钮退出，这时再次点击“File”菜单，Save浮动命令中的“Data Save as”，选择路径及文件名即可。

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